喹噁啉類藥物殘留測定方法——高效液相魚譜法
喹噁啉類藥物殘留測定方法——高效液相魚譜法
[db:作者] / 2022-12-21 00:00(3)高效液相魚譜法( high performance liquid chromatography, HPLC)
喹噁啉類藥物及其代謝物多屬中等極性,大多選用反相HPLC分離,流動相主要選用甲醇、乙腈和水,通過調節三者比例和梯度條件,各藥物可得到較好的分離;同時,流動相的pH影響待測物的存在形態,需要注意選擇合適的pH范圍。本類藥物及其代謝物的共平面共軛結構,具有紫外吸收特性。QCA和MQCA都有三個較強的吸收峰,吸收波長分別為204nm、 245nm和320nm;其他幾種藥物的UV-Vis吸收圖見圖15-3。因而,本類藥物HPLC檢測最常用的檢測器為紫外檢測器(ultraviolet detector,UVD)和二極管陣列檢測器(diode-array detector,DAD;photo-diode array detector,PDA)。
圖15-3幾種喹噁啉類藥物的UV-Vis光譜圖
(a)CYX;(b)BDCYX1)直接測定
Nasr等優化和驗證了一個測定雞肉、雞肝、牛肉、牛肝和牛奶中CBX和OLQ殘留量的HPLC方法。采用C18柱分離,以10%乙腈和含0.3%三乙胺的0.02mol/L磷酸緩沖液(pH4)作為流動相,梯度洗脫,在373nm波長檢測。該方法能夠在四分鐘能完成分析測定,CBX和OLQ的回收率分別在89.2%~93.6%和93.0%~107.2%范圍內。張小軍等用HPLC測定動物組織中OLQ殘留標示物MQCA。色譜柱為Sunfire C18柱(250 mm×4.6mm,5um),流動相為甲醇-1.0%甲酸(40+60,v/v),流速1.0mL/min,柱溫30℃,進樣量50μL,檢測波長320nm。豬肉、牛肉、對蝦和草魚的回收率為82.1%~90.3%,LOQ為4.0μg/kg。 實驗對同規格的ZORBAX SB-C18、Sunfire C18和X-Bridge C18三種色譜柱進行了比較,ZORBAX SB-C18和X-Bridge C18出峰較早,但有雜峰干擾,Sunfire C18出峰相對較晚,且分離效果好。實驗還比較了甲醇-1%甲酸(40+60,v/v)、甲醇-0.5%甲酸(30+70,v/v)兩組等度洗脫,以及甲醇、水和乙酸-乙酸鈉緩沖液梯度洗脫,發現以甲醇-1.0%甲酸(40+60,v/v)作為流動相時,色譜峰形和靈敏度最好。
QCA和MQCA等代謝物與喹惡啉類藥物原形極性差異較大,同一色譜條件不易操作,可以分別進樣測定。Huang等測定雞血液、肌肉、肝臟、腎臟和脂肪中CYX及其代謝物,HPLC色譜柱為ODS2(5um,250mm×4.6mm),流速1mL/min,色譜柱溫度30℃。CYX和BDCYX的色譜檢測條件為:0~8min,乙腈-水(15+85,v/v),紫外檢測波長305nm;8~15min,流動相線性轉化為乙腈-水(25+75,v/v),檢測波長為280nm;而QCA的流動相為甲醇-水-甲酸(40+60+10,v/v),檢測波長320nm。CYX和BDCYX的LOQ為0.025mg/kg(血和組織),回收率在73%~87%之間,日間RSD小于9.86%;QCA的LOQ為0.025mg/kg(血和內臟組織)和0.02mg/kg(肌肉);回收率為70%~87%,日間RSD為7.69%~11.43%。Zhang等用HPLC測定羊組織中的CYX、BDCYX和QCA。色譜柱為RP18(5um,4.6mm×250mm),流速1mL/min。CYX和BDCYX的流動相為乙腈-水,梯度洗脫,紫外檢測波長分別為305nm和280nm;QCA的流動相為1%甲酸水-甲醇(6+4,v/v),檢測波長為320nm。CYX的回收率為65%~79%,日間CV為6.7%~11.1%;BDCYX的回收率為70%~92%,日間CV為4.7%~15.9%;QCA回收率為70%~82%,日間CV為6.7%~11.1%;三種藥物的LOD均為15 μg/kg, LOQ為25 μg/kg。Huang等用HPLC測定豬、雞肉中QCT及其代謝物。色譜柱為Hyper sil ODS2(250mm×4.6mm),流速1mL/min,QCT流動相:甲醇-水(55+45,v/v),BDQCT 流動相:甲醇-水(7+3,v/v),MQCA流動相:1%甲酸水-甲醇(6+4,v/v),檢測波長為:312nm(QCT)、320nm(BDQCT和MQCA)。該方法回收率為71%~86%,CV為4%~12%;LOQ為0.05mg/kg,LOD為0.025mg/kg。當代謝物與藥物原形同時進樣測定時,可以采用梯度洗脫,或者在流動相中添加酸,以降低pH,并增加在反相色譜上的保留性能。梅景良等建立了魚、蝦中OLQ和MQCA的HPLC檢測方法。色譜柱為Inertsil ODS-3 C18柱(250mm×4.6mm,5um),流動相由純水、乙腈、甲醇和0.5%甲酸水組成,梯度洗脫,柱溫30℃,進樣量100μL,樣品運行時間為20min,雙波長檢測(OLQ為372nm,MQCA為320nm)。魚組織中OLQ和MQCA的LOD分別為6ugkg和10ug/kg,LOQ分別為20ug/kg和35μg/kg;蝦中的LOD分別為4.5μg/kg和8μg/kg,LOQ分別為15ug/kg和30μg/kg。Zhang等測定豬尿中MQX及其4種代謝物:1-脫氧乙酰甲喹、4-脫氧乙酰甲喹、BDMQX和MQCA。5mL樣品中加200μL甲醇和60μL四氯乙烷,超聲波萃取4min,離心后HPLC測定。C18色譜柱(5um,4.6mm×250mm)分離,流動相為甲醇-乙腈-水(26+26+48,v/v,含0.1%三氟乙酸),流速1mL/min,進樣量10μL,檢測波長320nm。方法LOD為0.16~0.28μg/L,回收率為72.0%~91.3%,CV小于5.2%。Wu等檢測動物肌肉、肝臟和魚肉中MQCA和QCA,用Eclipse XDB C18色譜柱(250mm×4.6mmid.)分離,柱溫30℃,流動相為甲醇-1%甲酸(35+65,v/v,pH2.7~3.1),流速1.0mL/min,檢測波長為320nm。QCA和MQCA的CCa為0.7~2.6μg/kg,CCβ為1.3~5.6μg/kg,回收率為70%~110%,CV小于20%。
2)柱后衍生測定
1-脫氧卡巴氧和4-脫氧卡巴氧主要采用HPLC柱后衍生方法測定。Aerts等測定豬肝、肌肉、腎臟中CBX、BDCBX、1-脫氧卡巴氧和4-脫氧卡巴氧殘留,采用柱切換HPLC系統-柱后衍生化檢測。富集柱為C18 Corasil(60mm×4.6mm,3~5.0um),流動相為水,流速0.6mL/min;色譜分析柱為C18柱(200mm×3mm,5um),流動相為0.01mol/L乙酸鈉緩沖液(乙酸調節pH6)-乙腈(85+15,v/v),流速0.5mL/min;柱后衍生試劑為0.5mol/L氫氧化鈉溶液,流速0.3mL/min,衍生化反應管(2m×0.5mm);420nm檢測。時間序列為:0min,進樣和淋洗;20min,切換六通閥柱反沖,檢測器自動調零;25min,復位六通閥;35min,結束。該方法各藥物的LOD為0.5~1μg/kg(CBX)、2~3μg/kg(BDCBX)、1~2μg/kg(1-脫氧卡巴氧和4-脫氧卡巴氧);回收率在81%~87%之間,CV為4%~10%。但是,在這種色譜條件下,QCA不保留,出峰過早與溶劑雜質峰重合而無法檢測。Binnendjk等也采用柱切換HPLC-柱后衍生的方法測定動物產品中CBX及其代謝物。富集柱為Sep-Pak C18(10mm×2.1mm),流動相為水,流速0.3mL/min;色譜分析柱為Chromaspher C18 (100mm×3mm),流動相為0.01mol/L乙酸鈉緩沖液(乙酸調pH6)-乙腈(86+14,v/v),流速0.5mL/min;柱后衍生試劑為0.5mol/L氫氧化鈉溶液,流速0.23mL/min,衍生化反應管(2m×0.5mm);390nm檢測。時間序列為:0min,進樣和淋洗;20min,切換六通閥柱,檢測器自動調零;25min,復位六通閥;35min,結束。豬腎、肌肉和肝中CBX的LOD為0.5~1μg/kg,BDCBX為0.5~2μg/kg;回收率為83%~95%,RSD小于14%。該法還適用于d血漿和蛋中CBX的測定,回收率在70%~80%之間。
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